Diagnosis of Tuberculosis: Between Established Practices and Emerging Innovations

 

Pedro E. Almeida da Silva^1,2, Ivy Ramis^1,2, Ana Julia Reis^1,2, Dienefer Bierhals¹, Yasmin Castillos¹, Mariana Souza¹, Andrea von Groll^1,2

 

¹ Universidade Federal do Rio Grande (FURG). Rio Grande, RS, Brasil.

² REDE-TB

 

Recebido em 18/04/2025

Aprovado em 15/05/2025

DOI: 10.21877/2448-3877.202500234.pt

 

INTRODUÇÃO

 

A tuberculose (TB) é uma doença infecciosa causada pelo Mycobacterium tuberculosis e constitui um dos mais relevantes problemas de saúde pública no cenário mundial contemporâneo. Apesar dos avanços no controle da doença, em 2023 mais de 10 milhões de casos foram estimados globalmente, com uma lacuna de aproximadamente 2,6 milhões de casos não diagnosticados ou não notificados, segundo a Organização Mundial da Saúde (OMS).⁽¹⁾

O diagnóstico laboratorial oportuno e acurado é um dos pilares para o controle efetivo da TB, pois permite o início precoce do tratamento, evita a progressão da doença e reduz a transmissão comunitária do M. tuberculosis.

 

METODOLOGIA

 

Trata-se de um artigo de revisão narrativa, elaborado a partir da análise crítica de publicações científicas e documentos técnico-normativos dos últimos 15 anos, com ênfase nos avanços e desafios do diagnóstico laboratorial da tuberculose. A busca foi conduzida nas bases de dados PubMed, SciELO e Scopus, utilizando os descritores “Mycobacterium tuberculosis” “tuberculosis”, “diagnosis”, “molecular test”, “drug resistance”, “biomarkers” e “culture”, combinados por operadores booleanos. Também foram consultados documentos oficiais da Organização Mundial da Saúde (OMS) e do Ministério da Saúde do Brasil.

Foram priorizados artigos com acesso aberto, revisões sistemáticas, estudos multicêntricos, guias técnicos e publicações com relevância para a prática laboratorial e a saúde pública. O recorte temporal abrangeu publicações de 2007 a 2024, com exceção dos artigos seminais. As referências foram organizadas conforme sua aplicabilidade às diferentes técnicas abordadas no texto.

 

MÉTODOS CLÁSSICOS DE DIAGNÓSTICO

 

Microscopia (Baciloscopia direta)

A microscopia (baciloscopia direta), realizada tradicionalmente com a coloração de Ziehl-Neelsen, é um dos métodos mais antigos e amplamente utilizados para a triagem inicial de casos de tuberculose pulmonar. Baseia-se na detecção de bacilos álcool-ácido resistentes (BAARs) em amostras clínicas, sobretudo escarro. Uma variação da técnica clássica é a coloração de Kinyoun, que utiliza maior concentração de fenol e fucsina para penetrar na parede celular, dispensando o aquecimento da lâmina. Embora ambas apresentem sensibilidade moderada, especialmente em casos com baixa carga bacilar, sua aplicação é justificada pela simplicidade operacional, baixo custo e possibilidade de implementação em diferentes níveis de atenção à saúde.⁽²⁾

A utilização da coloração por fluorescência com auramina-O é uma alternativa que aumenta a sensibilidade do método e reduz o tempo de leitura das lâminas. No entanto, exige microscópios específicos, com custo inicial mais elevado. Ambas as técnicas, embora úteis, não distinguem micobactérias do complexo M. tuberculosis de micobactérias não tuberculosas (MNT) e não fornecem informações sobre a viabilidade bacilar ou resistência aos antimicrobianos, limitando o seu uso como uma ferramenta de triagem inicial.

 

Cultura em Meios Sólidos

A cultura bacteriana é considerada padrão-ouro para o diagnóstico laboratorial da TB, permitindo não apenas a confirmação da presença do M. tuberculosis, mas também a realização de testes de sensibilidade aos antimicrobianos (TSA). Os meios sólidos mais utilizados incluem Löwenstein-Jensen e Ogawa-Kudoh, sendo este último uma alternativa de menor custo e de fácil preparação.⁽³⁾ Ambos reconhecidos por sua alta capacidade de detecção do bacilo, mesmo em amostras com baixas cargas bacilares. Além destes também existem meios como o Middlebrook 7H10 e 7H11, desenvolvidos à base de ágar, e o suplemento OADC (oleato de sódio, albumina bovina, dextrose e catalase). Esses meios têm como vantagem o crescimento mais rápido do M. tuberculosis e a melhor definição das colônias, o que favorece a quantificação e o isolamento de cepas. No entanto, seu uso no Brasil é limitado por diversos fatores, como por exemplo maior risco de contaminação e custo mais elevado.

Além de permitir o isolamento do microrganismo, o cultivo possibilita a realização de TSA, essencial para a escolha do tratamento adequado, especialmente em pacientes com risco de apresentarem TB com cepas resistentes aos antimicrobianos, como, por exemplo, em pacientes em retratamento.

No entanto, a metodologia é laboriosa e o resultado tardio, com tempo médio de 3 a 8 semanas, e pode ser afetado por contaminações bacterianas ou fúngicas, mesmo quando os procedimentos de coleta e descontaminação são realizados adequadamente. Além disso, após o crescimento é necessário o uso de métodos complementares para a identificação do microrganismo.

O uso da cultura em meio sólido é especialmente indicado quando há suspeita de coinfecção com MNT ou para o diagnóstico de TB extrapulmonar, onde a carga bacilar é geralmente baixa e a baciloscopia tem baixa sensibilidade. O método de cultivo em meio Ogawa-Kudoh representa uma alternativa simplificada e de baixo custo para o isolamento do M. tuberculosis. Sua principal vantagem está na simplificação da etapa de  descontaminação.⁽³⁾

 

Cultura em Meios Líquidos Automatizados

A cultura em meio líquido, além de ser também considerada padrão-ouro,  representa um avanço significativo em relação aos métodos sólidos, principalmente em termos de tempo para detecção de crescimento bacteriano. Os sistemas semiautomatizados, como o BACTEC MGIT (Mycobacterial Growth Indicator Tube), que utilizam sensores como o rutênio, emitem fluorescência quando ocorre consumo de oxigênio decorrente do crescimento do M. tuberculosis e, portanto, detectam o metabolismo bacteriano antes de um crescimento visível no meio de cultura, permitindo a obtenção de resultados entre 8 a 10 dias.⁽³⁾

Além da detecção do bacilo, os sistemas semiautomatizados permitem a realização de testes de sensibilidade em meio líquido com maior rapidez e padronização. Assim como os cultivos em meio sólido, o cultivo em meio líquido é sensível a contaminações e requer confirmação posterior da espécie. Apesar  dessas limitações, a cultura líquida desempenha um papel importante no diagnóstico confirmatório e no monitoramento da resistência bacteriana aos antimicrobianos, sendo amplamente recomendada para laboratórios de referência e vigilância epidemiológica.

 

TESTES MOLECULARES RÁPIDOS

 

Plataformas baseadas em PCR em tempo real

Nos últimos anos, os testes moleculares rápidos revolucionaram o diagnóstico da TB ativa. Esses ensaios são capazes de detectar diretamente o DNA do M. tuberculosis em amostras clínicas, oferecendo elevada sensibilidade e especificidade, além da possibilidade de identificar mutações associadas à resistência antimicrobiana. Entre as plataformas diagnósticas mais utilizadas destacam-se o Xpert MTB/RIF Ultra, o Truenat MTB e o STANDARD M10.^(4-6)

O Xpert MTB/RIF Ultra é uma plataforma semiautomatizada baseada em PCR em tempo real que fornece resultados em cerca de duas horas. Além de detectar o bacilo, identifica mutações no gene rpoB, associadas à resistência à rifampicina. O Truenat MTB opera de forma semelhante, com o diferencial de ser portátil e indicado para ambientes com infraestrutura reduzida. Já o STANDARD M10 realiza a detecção simultânea do M. tuberculosis e de mutações relacionadas à resistência à rifampicina e isoniazida, ampliando a abrangência diagnóstica.

Essas tecnologias são recomendadas pela OMS como testes iniciais, em substituição a métodos menos sensíveis, como a baciloscopia. Seus principais benefícios incluem rapidez, acurácia e facilidade de operação. No entanto, apresentam limitações como custo elevado, dependência de insumos importados e necessidade de manutenção técnica especializada.⁽⁴⁾

O uso de métodos laboratoriais não comerciais não são uma novidade na rotina diagnóstica, e neste sentido o uso de PCR in house com protocolos consolidados pela literatura científica tem se destacado como uma alternativa eficaz e acessível para o diagnóstico molecular da TB e outras micobacterioses. Protocolos multiplex in house vêm sendo propostos e avaliados com sucesso para detecção simultânea do gênero Mycobacterium, M. tuberculosis e o complexo M. avium (MAC), com potencial aplicação em diferentes contextos epidemiológicos.^(7,8) A flexibilidade e custo reduzido  desses testes reforçam a importância de metodologias adaptáveis, desde que validadas internamente com critérios robustos de sensibilidade, especificidade e reprodutibilidade.⁽⁹⁾

 

Plataformas de alto rendimento

Para centros de maior complexidade, plataformas como o Abbott RealTime MTB Assay têm sido utilizadas com sucesso. Capaz de processar grandes volumes de amostras simultaneamente, o sistema se destaca pela automação completa e pela possibilidade de integrar fluxos laboratoriais preexistentes. Sua versão complementar — MTB RIF/INH Resistance — permite a detecção de mutações associadas à resistência à rifampicina e isoniazida com elevada sensibilidade.⁽¹⁰⁾

Entretanto, o alto custo de aquisição, a necessidade de infraestrutura laboratorial sofisticada e a logística de suprimentos podem restringir sua adoção em larga escala, sobretudo em países com recursos limitados.

 

Amplificação isotérmica (TB-LAMP)

Como alternativa aos testes baseados em PCR, o ensaio TB-LAMP (Loop-mediated isothermal amplification) utiliza a amplificação isotérmica de ácidos nucleicos e dispensa o uso de termocicladores. Essa característica o torna mais viável para contextos com infraestrutura básica. A leitura pode ser feita visualmente ou com equipamentos simples, sendo possível obter resultados em menos de uma hora.⁽¹¹⁾

Mais recentemente, foi desenvolvido o rt-LAMP, uma versão de leitura em tempo real, com desempenho superior à versão anterior. Este método apresenta elevada acurácia diagnóstica e, por utilizar plataformas abertas, representa um avanço relevante em termos de flexibilidade e custo-benefício. Entretanto, o método ainda exige extração prévia de DNA, não fornece informações sobre resistência a antimicrobianos, requer estrutura laboratorial mínima e profissionais capacitados, fatores que podem limitar sua implementação em ambientes com recursos escassos.⁽¹²⁾

Recomendado pela OMS como substituto da baciloscopia em ambientes com recursos limitados⁶, apresenta boa sensibilidade em amostras de escarro, mas ainda carece de validação para uso em outras matrizes clínicas. Ademais, não fornece informações sobre resistência a antimicrobianos, o que limita seu uso isolado em protocolos diagnósticos mais completos.⁽¹⁰⁾

 

BIOMARCADORES E TECNOLOGIAS EMERGENTES

 

A busca por métodos diagnósticos mais rápidos, sensíveis e aplicáveis em diversos contextos levou ao desenvolvimento de testes baseados em biomarcadores e tecnologias emergentes. Embora muitos ainda estejam em fase de validação, alguns já vêm sendo utilizados como complemento aos métodos tradicionais e moleculares.

 

Antígenos micobacterianos na urina (LAM)

O teste Determine TB LAM Ag detecta o lipoarabinomanano (LAM), um glicolipídeo da parede celular do M. tuberculosis, presente na urina de pacientes com TB ativa⁷. Recomendado pela OMS para triagem em pessoas vivendo com HIV e contagem de CD4 <200 células/mm³, apresenta resultado em até 25 minutos e tem sido utilizado em hospitais de referência. Sua sensibilidade, no entanto, é limitada em pacientes imunocompetentes.^(13,14)

 

Assinaturas transcricionais e painéis proteômicos

Estudos recentes têm identificado assinaturas gênicas capazes de distinguir TB ativa de infecção latente, utilizando perfis de expressão em sangue periférico. Genes associados à resposta inflamatória, especialmente via interferons do tipo I, têm se mostrado promissores.⁽⁸⁾ Em paralelo, painéis multiplex de proteínas plasmáticas — como IP-10, IL-6 e CRP — vêm sendo avaliados como marcadores de atividade da doença ou resposta ao tratamento.^(13-16)

 

Metabolômica microRNAs

Pesquisas emergentes apontam para o potencial da metabolômica (como perfis de ácidos graxos, aminoácidos e compostos voláteis) e de microRNAs circulantes como ferramentas diagnósticas de alta sensibilidade. Apesar do entusiasmo científico, essas tecnologias ainda estão em fase exploratória e carecem de padronização, validação clínica e viabilidade operacional.

Apesar do potencial promissor, o uso de biomarcadores para o diagnóstico da TB ainda apresenta limitações significativas. A maioria dos marcadores atualmente em estudo carece de validação clínica em populações diversas, o que restringe sua ampla utilização. Muitos testes baseados em biomarcadores requerem infraestrutura laboratorial especializada, como plataformas de biologia molecular ou espectrometria de massas, o que dificulta sua aplicação em larga escala, especialmente em regiões com recursos limitados. Além disso, a variação individual da resposta imunológica e a influência de coinfecções, comorbidades ou estado nutricional do paciente podem comprometer a acurácia diagnóstica. A ausência de padronização entre protocolos, reagentes e plataformas analíticas também limita a reprodutibilidade entre estudos. Por fim, os custos ainda elevados e a ausência de kits comerciais validados dificultam a incorporação dos biomarcadores à prática clínica rotineira.^(17,18)

 

Identificação proteômica por MALDI-TOF

A espectrometria de massas por MALDI-TOF despontou como uma ferramenta poderosa para a identificação rápida de microrganismos, incluindo micobactérias. A tecnologia baseia-se na análise do perfil proteico das células bacterianas, gerando um “espectro de massa” específico que pode ser comparado a bancos de dados para identificação em nível de espécie. No contexto da TB, o MALDI-TOF tem sido utilizado principalmente para a identificação do complexo M. tuberculosis a partir de culturas, seja em meio sólido ou líquido, com alta acurácia, rapidez (minutos) e custo operacional reduzido após a instalação do sistema.

Embora o MALDI-TOF seja recomendado para aplicação em cultivo puro, alguns estudos têm demonstrado que ele pode ser realizado diretamente a partir de amostras clínicas, como escarro e fluido de lavagem broncoalveolar, com alta sensibilidade e especificidade. O MALDI-TOF representa uma plataforma promissora, especialmente para aceleração da identificação das espécies de micobactérias em culturas, contribuindo para o manejo adequado dos casos e para o fluxo diagnóstico laboratorial.^(19-20)

 

DETECÇÃO DA RESISTÊNCIA AOS ANTIMICROBIANOS

 

A resistência do M. tuberculosis aos antimicrobianos representa um dos maiores desafios para a redução das taxas globais da TB. A identificação rápida e acurada de cepas resistentes é essencial para o início oportuno de regimes terapêuticos eficazes, a interrupção da transmissão do bacilo e a melhoria dos desfechos clínicos. Os métodos laboratoriais disponíveis para a detecção da resistência aos antimicrobianos podem ser agrupados em duas grandes categorias: fenotípicos e moleculares

 

Métodos Fenotípicos

Os testes fenotípicos avaliam a capacidade de crescimento do M. tuberculosis na presença de concentrações críticas de antimicrobianos. O método das proporções é uma técnica fenotípica clássica, amplamente utilizada para avaliar a sensibilidade do M. tuberculosis aos antimicrobianos em meio de cultura sólido, especialmente Löwenstein-Jensen. Ele se baseia na comparação do crescimento bacteriano em meios com e sem antimicrobianos, determinando se a cepa testada é sensível ou resistente com base em uma proporção crítica de crescimento. A interpretação dos resultados é feita por comparação entre os dois tubos. Se a proporção de colônias que crescem no meio com o antimicrobiano for igual ou superior a 1% em relação ao número de colônias no tubo controle, considera-se que a cepa é resistente ao antimicrobiano testado. Por outro lado, se essa proporção for inferior a 1%, a cepa é classificada como sensível.⁽²¹⁾

Embora o método das proporções apresente limitações relevantes — como o tempo prolongado para liberação de resultados e a exigência de infraestrutura laboratorial de NB-3 — ele continua a desempenhar um papel fundamental na avaliação da resistência do M. tuberculosis. Diferente dos testes moleculares, esse método permite avaliar diretamente a viabilidade bacilar na presença de antimicrobianos, fornecendo um retrato funcional da resistência, independentemente do mecanismo genético envolvido. Essa abordagem é particularmente valiosa na detecção de resistência determinada por  mutações fora das regiões-alvo cobertas pelos testes moleculares e mecanismos de resistência desconhecidos e/ou não relacionado a mutações, como alterações na permeabilidade da parede celular ou superexpressão de bombas de efluxo. Além disso, o método das proporções possibilita a avaliação de uma gama mais ampla de fármacos, incluindo substâncias de segunda linha ou novos compostos em estudo, o que amplia sua aplicabilidade em contextos clínicos e de vigilância

O BACTEC MGIT é um sistema semiautomatizado amplamente utilizado para a detecção do crescimento de micobactérias e para a realização de testes de sensibilidade fenotípica em meio líquido. O teste compara o crescimento do M. tuberculosis em tubos contendo antimicrobianos, com tubos controle. Quando o bacilo cresce na presença do medicamento, indica resistência. O BACTEC MGIT 960 oferece resultados mais rápidos que os métodos em meio sólido (cerca de 7 a 14 dias), é validado para substâncias de primeira e segunda linhas e é considerado padrão-ouro em laboratórios de referência. No entanto, exige infraestrutura de NB3, alto custo operacional e controle rigoroso de contaminações.⁽²²⁾

Outros métodos fenotípicos incluem ensaios colorimétricos como o REMA (Resazurin Microtiter Assay) e o NRA (Nitrate Reductase Assay). O REMA é um método colorimétrico baseado na redução da resazurina, um corante azul, em resorufina, de cor  rosa, na presença de bactérias viáveis O ensaio é realizado em placas de microdiluição  com poços contendo diferentes concentrações do antimicrobiano a ser testado. Após incubação com a suspensão de M. tuberculosis, adiciona-se a resazurina e a leitura é feita visualmente ou utilizando espectrofotômetro. Se o corante for reduzido (mudança de cor para rosa), indica crescimento bacteriano e, portanto, resistência. Se permanecer azul, não houve crescimento bacteriano, sendo considerada sensível. É um método de baixo custo, rápido (5 a 10 dias), muito utilizado em laboratórios de pesquisa, mas ainda não padronizado para uso clínico de rotina. Pode ser útil para triagem inicial ou para testes de novos antimicrobianos.

O método de nitrato redutase é um método colorimétrico baseado na capacidade do M. tuberculosis de reduzir nitrato a nitrito. O teste é realizado em meio de cultivo suplementado com nitrato e com antimicrobianos em concentrações críticas. Se a bactéria cresce e reduz o nitrato, ocorre uma reação de coloração visível pela adição de reagentes (geralmente ácido sulfúrico e α-naftilamina), indicando resistência. Caso não haja redução visível, a cepa é considerada sensível. É um método de baixo custo, simples de implementar e com desempenho comparável a testes convencionais, sendo útil especialmente em cenários com recursos limitados. No entanto, sua padronização e aplicação rotineira ainda são limitadas a determinados antimicrobianos, como rifampicina e isoniazida.^(23-25)

 

Métodos Moleculares

Além das plataformas já mencionadas que  realizam simultaneamente a detecção do M. tuberculosis e de mutações associadas à resistência à rifampicina (Xpert MTB/RIF Ultra e Truenat MTB) ou à rifampicina e isoniazida (STANDARD M10 e Abbott RealTime MTB Assay), com alta acurácia, o sistema Xpert conta com a versão de cartucho Xpert MTB/XDR. Esta versão é capaz de detectar simultaneamente resistência à rifampicina, isoniazida (katG e inhA), fluoroquinolonas (gyrA e gyrB) e aminoglicosídeos (rrs e eis), diretamente da amostra clínica, e apresenta resultados em torno de duas horas. As limitações são as mesmas já apresentadas na seção de diagnóstico.⁽²⁶⁾

Os LPAs são ensaios baseados em hibridização reversa que identificam mutações em genes associados à resistência. Permitem detectar resistência a múltiplos antimicrobianos simultaneamente, sendo recomendados pela OMS como testes de segunda linha em laboratórios de referência. Apesar de sua acurácia os LPAs apresentam limitações importantes, como por exemplo: detectar apenas mutações previamente conhecidas e localizadas em regiões-alvo específicas dos genes, o que pode resultar em falsos negativos quando a resistência é mediada por mutações raras, silenciosas ou em regiões não cobertas pela sonda.

Além disso, a interpretação dos resultados pode ser complexa, especialmente quando ocorrem padrões mistos de bandas (heterorresistência), exigindo mão de obra especializada e experiência técnica. Outro ponto crítico é a exigência de infraestrutura laboratorial intermediária, com equipamentos de biologia molecular e áreas separadas para evitar contaminação cruzada. Por fim, os LPAs ainda dependem de amostras com carga bacilar elevada ou culturas positivas, o que limita sua aplicação direta em amostras paucibacilares ou extrapulmonares.⁽²⁷⁾

Mais recentemente, métodos de sequenciamento de nova geração (NGS) têm sido utilizados em laboratórios de referência para caracterização completa do perfil genético de resistência. Plataformas como o Deeplex® Myc-TB permitem detectar múltiplas mutações simultaneamente, identificar linhagens e até detectar heterorresistência. Apesar do alto custo e complexidade, esses métodos oferecem uma visão aprofundada da resistência e têm papel crescente na vigilância e na individualização do tratamento.^(28,29)

 

CONSIDERAÇÕES FINAIS

 

O diagnóstico laboratorial da tuberculose passou por transformações significativas nas últimas décadas, com a incorporação de plataformas moleculares e abordagens baseadas em biomarcadores. Esses avanços permitiram ganhos substanciais em termos de sensibilidade, rapidez e especificidade, contribuindo para o diagnóstico precoce e o controle da cadeia de transmissão do M. tuberculosis.

Contudo, persistem desafios estruturais e operacionais que limitam a adoção ampla e equitativa dessas tecnologias, especialmente em países com alta carga de TB. Entre eles, destacam-se os altos custos de aquisição e manutenção dos equipamentos, a dependência de insumos importados, a necessidade de infraestrutura laboratorial adequada e a capacitação contínua das equipes de saúde. Por isso, a escolha da plataforma diagnóstica deve considerar, além das  características intrínsecas do teste (Quadro 1), fatores como carga local da doença, prevalência de coinfecções (como HIV), recursos financeiros disponíveis, perfil epidemiológico da resistência e capacidade operacional dos serviços de saúde.

Apesar dos progressos, desafios importantes persistem, especialmente em relação à equidade no acesso às tecnologias diagnósticas. A maioria dos países com alta carga de TB ainda enfrenta barreiras estruturais, como limitações orçamentárias, falta de capacitação técnica e dependência de insumos importados. Além disso, a complexidade dos algoritmos diagnósticos e a necessidade de integração entre diferentes plataformas e níveis de atenção exigem um planejamento estratégico robusto por parte dos sistemas de saúde.

Nesse cenário, torna-se fundamental adotar uma abordagem racional e contextualizada para a escolha das estratégias laboratoriais. Métodos clássicos como baciloscopia e cultura continuam sendo valiosos, especialmente quando integrados a testes moleculares rápidos. A detecção da resistência aos antimicrobianos deve combinar ferramentas moleculares e fenotípicas, respeitando as capacidades locais e as necessidades clínicas individuais.

Iniciativas voltadas à descentralização do diagnóstico, fortalecimento da rede laboratorial, formação continuada de profissionais e incorporação de tecnologias adaptadas à realidade local são imprescindíveis para o avanço sustentável no enfrentamento da TB. O futuro do diagnóstico laboratorial da tuberculose dependerá da articulação entre inovação tecnológica, políticas públicas e compromisso com o acesso universal à saúde.

 

AGRADECIMENTOS

 

Os autores agradecem o apoio do Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq) para a concessão de bolsa de produtividade em pesquisa a Pedro Eduardo Almeida da Silva e fomento ao INCT-TB.

 

Quadro 1

Principais métodos laboratoriais para o diagnóstico da tuberculose

Método	Tipo de Detecção	Sensibilidade (%)	Tempo para Resultado	Exige condições  especiais de biossegurança ?	Detecta Resistência?	Observações
Baciloscopia (ZN)	Microscopia	50–60	<1 dia	Não	Não	Baixo custo, triagem inicial
Baciloscopia (Auramina)	Fluorescência	60–70	<1 dia	Não	Não	Mais sensível que a baciloscopia comum, requer microscópio de fluorescência
Cultura (LJ)	Crescimento bacteriano	80–85	3–8 semanas	Sim	Sim (com TSA)	Padrão ouro, tempo prolongado
Cultura (BACTEC MGIT)	Crescimento automatizado	85–90	7–14 dias	Sim	Sim (com TSA)	Rápido, alto custo, padrão-ouro
Xpert MTB/RIF Ultra	PCR em tempo real	85–95	~2 horas	Não	Sim (rifampicina)	Recomendado pela OMS, rápido, alto custo
Truenat MTB	PCR em tempo real	80–90	~1 hora	Não	Sim (rifampicina)	Recomendado pela OMS, rápido, alto custo
Standard M10	PCR em tempo real	85–95	~2 horas	Não	Sim (rifampicina)	Recomendado pela OMS rápido, alto custo
TB-LAMP	Amplificação isotérmica	75–85	~1 hora	Não	Não	Substitui baciloscopia em locais remotos
PCR In house	PCR/PCR em Tempo real	85-95	5 horas	Não	Não	Flexível e baixo custo, pode detectar MNT exige pessoal qualificado em biologia molecular

Fonte: Elaboração própria (2025).

 

 

REFERÊNCIAS

 

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Correspondência

Pedro E. Almeida da Silva

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