Mutações do HIV e falha virológica em pacientes de um centro de referência no sudoeste da Bahia (2019-2023)

HIV Mutations and Virological Failure in Patients from a Reference Center in Southwestern Bahia, Brazil (2019-2023)

 

Jéssica Bomfim de Almeida1, Wilson Gomes Sousa Junior2, Stanley Alves Nunes3, Anna Carolina Saúde Dantas4, Milena Soares dos Santos5

 

1,2,5 Universidade Federal da Bahia, Campus Anísio Teixeira, Farmácia. Vitória da Conquista, BA, Brasil.

3 Universidade Federal da Bahia, Campus Anísio Teixeira, Medicina. Vitória da Conquista, BA, Brasil.

4 Centro de Atenção de Apoio à Vida (CAAV) Dr. David Capistrano (CR em DST/AIDS), no Laboratório Central Municipal de Vitória da Conquista, Farmacêutica-bioquímica. Vitória da Conquista, BA, Brasil.

 

Recebido em 19/02/2025

Aprovado em 28/03/2025

DOI: 10.21877/2448-3877.202500224.pt

 

INTRODUÇÃO

 

Desde a década de 1980, as infecções pelo vírus da imunodeficiência humana (HIV) têm representado um grande impacto na saúde pública global devido à sua alta transmissibilidade e morbidade e mortalidade.(1) A progressão da infecção pelo HIV na ausência de um tratamento adequado pode provocar imunossupressão e surgimento de neoplasias e infecções oportunistas, que caracterizam a Síndrome da Imunodeficiência Humana (AIDS).(2) Nas últimas décadas, avanços na terapia antirretroviral (TARV) têm promovido controle adequado da carga viral, redução da transmissão do vírus, manutenção da imunidade e aumento da expectativa de vida das pessoas que vivem com HIV/AIDS (PVHA).(3-5)

Segundo a United Nations Programme on HIV/AIDS (UNAIDS), o maior acesso à TARV reduziu, no mundo, o número de óbitos de 1,3 milhão em 2010 para 630 mil em 2022, prevenindo cerca de 20,8 milhões de mortes neste período.(6) No Brasil, estima-se que, no ano de 2023, 96% das PVHA sabiam do seu diagnóstico, 78% delas estavam em tratamento regular e 75% das pessoas em tratamento apresentavam supressão viral.(7,8)

As classes de antirretrovirais atualmente disponíveis para uso clínico no Brasil são: inibidores de transcriptase reversa de nucleosídeo (ITRN); inibidores de transcriptase reversa não nucleosídeo (ITRNN); inibidores de integrase (INI); inibidores de protease (IP); inibidores de entrada (antagonista de CCR5 e inibidor de fusão).(9) Eles podem atuar em diferentes etapas da replicação viral através da atuação em enzimas como a transcriptase reversa (ITRN e ITRNN), que é responsável pela síntese de DNA a partir do RNA viral, a integrase (INI), que realiza a inclusão desse material genético no genoma da célula infectada, ou a protease (IP), que atua na maturação do vírus.(10) Outros mecanismos de ação incluem a inibição dos receptores responsáveis pela entrada do vírus nas células humanas ou a inibição da fusão da membrana viral com a membrana celular.(11)

O tratamento e a prevenção do HIV no Brasil são disponibilizados pelo Sistema Único de Saúde (SUS), e as orientações para os profissionais de saúde são definidas pelos Protocolos Clínicos e Diretrizes Terapêuticas para Manejo da Infecção por HIV (PCDT-HIV).(9) Os esquemas terapêuticos preconizados abrangem o uso de três antirretrovirais distintos, sendo, no esquema preferencial para início de tratamento, dois ITRN e um INI, em uma dose única diária, com ajustes realizados conforme a resposta ao tratamento.(9) Um dos motivos para a escolha dessa estratégia é porque cada medicamento individualmente é capaz de controlar de forma adequada a carga viral, ou seja, mesmo que surja resistência a uma das substâncias, as outras duas serão capazes de limitar a replicação viral, reduzindo o desenvolvimento das variantes resistentes.(12,13)

Mesmo nesse contexto, é fundamental que a PVHA mantenha um acompanhamento regular da carga viral, pois podem ocorrer falhas no tratamento, também chamadas de falha virológica.(9) As falhas virológicas são definidas como carga viral > 200 cópias/mL após um período de 6 meses de TARV ou após um período de supressão da replicação viral.(14) Para esses pacientes, é recomendado investigar a ocorrência de mutações virais que concedam resistência ao tratamento, mas é importante averiguar, também, a má adesão ao tratamento, interações medicamentosas, comorbidades que provoquem má absorção dos fármacos ou, ainda, a escolha inadequada do esquema terapêutico.(15)

A genotipagem viral é o exame que identifica as mutações no vírus, e é indicada nas seguintes situações: em casos de falha virológica; pessoas que tenham se infectado por parceria que fazia uso de TARV; pessoas que fizeram uso de PrEP (profilaxia pré-exposição); gestantes, crianças, adolescentes e pacientes com diagnóstico de coinfecção tuberculose-HIV.(9) A partir da genotipagem é possível traçar um perfil genotípico de resistência, que consiste no padrão de mutações presentes no vírus analisado e seu padrão de suscetibilidade a diferentes antirretrovirais.(16)

As mutações causadoras de resistência podem ser classificadas em dois tipos: adquiridas, que surgem quando fatores como má adesão ao tratamento impedem a supressão viral completa, permitindo a replicação de variantes resistentes; e transmitidas, que ocorrem quando o indivíduo é infectado por uma cepa resistente, representando 9,5% das novas infecções no Brasil.(17,18) Essas mutações são representadas através da identificação da sua localização e dos aminoácidos que sofreram mutação, como, por exemplo, a mutação M184V, que indica uma mutação no códon 184, em que uma metionina (M) foi substituída por uma valina (V).(16)

No Brasil, os testes de genotipagem do HIV gerenciados pelo Ministério da Saúde identificam mutações no gene da transcriptase reversa e da protease do gene POL, sendo possível realizar a análise de genes adicionais a depender da indicação clínico-epidemiológica.(9) Sendo assim, o objetivo deste trabalho é traçar o perfil clínico-epidemiológico, identificar a prevalência de mutações genômicas associadas à resistência aos antirretrovirais e analisar o painel de sensibilidade em pacientes que vivem com HIV e realizaram genotipagem viral entre 2019 e 2023 no município de Vitória da Conquista.

 

MATERIAL E MÉTODOS

 

Tipo de estudo

Trata-se de um estudo transversal, observacional e retrospectivo, que analisou mutações genômicas do HIV associadas à falha virológica e resistência viral. A pesquisa foi conduzida com base em dados clínicos e laboratoriais de pacientes atendidos no Centro de Atenção e Apoio à Vida (CAAV) em Vitória da Conquista, Bahia, durante o período de 2019 a 2023. Este estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética em Pesquisa da Universidade Federal da Bahia (UFBA), por meio do Parecer nº 7.032.639/2024.

 

População do estudo e amostra

A amostra do estudo foi composta por indivíduos adultos (≥ 18 anos) diagnosticados com HIV, com ou sem condições definidoras de AIDS, em tratamento com TARV, atendidos pela equipe médica do CAAV e que realizaram genotipagem viral no período de 2019 a 2023.

Foram excluídos pacientes sem informações epidemiológicas e laboratoriais disponíveis. Após a seleção dos participantes, cada indivíduo recebeu um código de identificação aleatório exclusivo, garantindo a confidencialidade e o anonimato dos dados coletados.

 

Coleta de dados

A coleta de dados foi realizada de setembro a novembro de 2024. A identificação inicial dos pacientes que fizeram a genotipagem no período estudado foi realizada a partir do e-mail institucional utilizado para comunicar as demandas de novas genotipagens ao laboratório de referência. Os códigos dos prontuários foram localizados nos registros do programa Complab Advanced.

Os dados clínicos e laboratoriais dos pacientes foram coletados utilizando o prontuário físico e os sistemas SICLOM (Sistema de Controle Logístico de Medicamentos), SISCEL (Sistema de Controle de Exames Laboratoriais) e LAUDO, que fornece dados sobre carga viral, contagem de linfócitos T CD4+/TCD8+ e laudos das genotipagens.

As variáveis coletadas foram agrupadas em três categorias: sociodemográficas, incluindo idade, estado civil, cor e sexo; clínicas, como o motivo das genotipagens e a adesão ao tratamento (satisfatória/insatisfatória); e laboratoriais, englobando carga viral e contagem de linfócitos T CD4+ em 3 momentos (no diagnóstico, na genotipagem e mais recente), resultados das genotipagens e painel de sensibilidade aos antirretrovirais. A adesão ao tratamento foi classificada de acordo com o controle da carga viral e com a regularidade da dispensação pela farmácia. Os principais desfechos avaliados foram a prevalência de mutações de resistência e o perfil de sensibilidade aos antirretrovirais. As informações coletadas foram registradas e organizadas no software KoboToolBox® e posteriormente tabuladas no Microsoft Excel Professional Plus, versão de 2019.

 

Análise estatística

A análise estatística foi realizada utilizando o software Stata®, versão 18.5. As variáveis categóricas foram apresentadas como frequências absolutas e relativas. As variáveis contínuas foram analisadas por meio de medidas de tendência central (médias e mediana) e dispersão (desvio-padrão). Para a análise univariada foi aplicado o teste de qui-quadrado como parte da avaliação descritiva das variáveis coletadas, admitindo um valor de p<0,05. O software Microsoft Office Excel Professional Plus®, versão de 2019, foi utilizado para a tabulação das mutações observadas e para o cálculo das suas respectivas prevalências.

 

RESULTADOS

 

Seleção de Pacientes

Após a análise inicial, foram identificados um total de 104 registros de genotipagens realizadas no período entre 2019 e 2023. Destes, foram excluídos 9 pacientes menores de 18 anos no momento do exame, 8 genotipagens registradas em duplicidade e 7 prontuários não localizados. Após exclusões, 80 genotipagens foram consideradas para análise.

 

Dados Sociodemográficos

Dentro da população estudada, a idade variou entre 23 e 71 anos, com média de 46 anos (± 10,58). A distribuição da população conforme os dados sociodemográficos está descrita na Tabela 1.

Ao estratificar a população, observa-se que há uma distribuição homogênea quanto ao sexo, estado civil e adesão ao tratamento. A maioria dos pacientes pertence à faixa etária de 40 a 49 anos (36,2%), com maior proporção de indivíduos casados (45%) e de cor parda (40%). A principal categoria de exposição ao HIV foi a via sexual, predominantemente heterossexual (71,2%). Houve diferença significativa em relação ao motivo da genotipagem por conta da genotipagem solicitada para gestantes, que abarca apenas pacientes do sexo feminino. Verificou-se que 56,2% dos pacientes mantinham adesão insatisfatória ao tratamento (Tabela 1).

Em relação à carga viral, foi observada uma diminuição da proporção de pacientes com carga viral igual ou maior que 100.000 cópias/mL entre o momento do diagnóstico e a avaliação mais recente, de 28,6% para 7,5%. Além disso, a adesão satisfatória teve associação com carga viral < 100.000 cópias/mL no exame mais recente (p=0,02). Em contrapartida, a parcela de pacientes com contagem de linfócitos T CD4+ < 200 aumentou de 21,2% para 25,0% entre o diagnóstico e o exame mais recente, sem uma correlação aparente com a adesão ao tratamento (Tabela 2).

 

Tabela 1

Distribuição sociodemográfica estratificada por sexo em pacientes que realizaram genotipagem (2019-2023).

  Sexo Feminino

n (%)

Sexo Masculino

n (%)

Total

n (%)

x² (p)
Total 40 (50%) 40 (50%) 80 (100%) –
Faixa Etária        
  18 – 29 anos 3 (3,7%) 0 (0,0%) 3 (3,7%) 7,589 (0,146)
  30 – 39 anos 11 (13,7%) 9 (11,2%) 20 (25,0%)
  40 – 49 anos 16 (20,0%) 13 (16,2%) 29 (36,2%)
  50 – 59 anos 6 (7,5%) 13 (16,2%) 19 (23,7%)
  60 – 69 anos 3 (3,7%) 5 (6,2%) 8 (10,0%)
  70 – 79 anos 1 (1,2%) 0 (0,00%) 1 (1,2%)
Estado Civil        
  Não informado 2 (2,5%) 3 (3,7%) 5 (6,2%) 5,377 (0,146)
  Casado (a) 23 (28,7%) 13 (16,2%) 36 (45,0%)
  Solteiro (a) 14 (17,5%) 21 (26,2%) 35 (43,7%)
  Viúvo (a) 1 (1,2%) 3 (3,7%) 4 (5,0%)
Cor        
  Não informado 9 (11,2%) 19 (23,7%) 28 (35,0%) 5,839 (0,120)
  Branca 3 (3,7%) 3 (3,7%) 6 (7,5%)
  Parda 19 (23,7%) 13 (16,2%) 32 (40,0%)
  Preta 9 (11,2%) 5 (6,2%) 14 (17,5%)
Meio de Exposição        
  Não informado 9 (11,2%) 8 (10,0%) 17 (21,2%) 2,88 (0,237)
  Sexual (Heterossexual) 30 (37,5%) 27 (33,7%) 57 (71,2%)
  Sexual (Homossexual) 1 (1,2%) 5 (6,2%) 6 (7,5%)
  Vertical 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%)
  Hemotransfusão 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%)
  Uso de Injetáveis 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%)
  Acidente de Trabalho 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%)
Motivo da Genotipagem        
  Não documentado 2 (2,5%) 4 (5,0%) 6 (7,5%) 14,279 (0,001)
  Falha virológica 26 (32,5%) 36 (45,0%) 62 (77,5%)
  Gestante 12 (15%) 0 (0,0%) 12 (15%)
  Soroconversão 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%)
  Uso de PrEP 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%)
  Coinfecção TB-HIV 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%)
Adesão ao Tratamento        
   Insatisfatória 25 (31,2%) 20 (25,0%) 45 (56,2%) 1,269
(0,260)
   Satisfatória 15 (18,7%) 20 (25,0%) 35 (43,7%)

Tabela 2

Carga viral e contagem de linfócitos T CD4+ no diagnóstico, na genotipagem e mais recente, de acordo com a adesão ao tratamento.

  Adesão Insatisfatória

n (%)

Adesão Satisfatória

n (%)

Total

n (%)

x² (p)
Carga Viral no Diagnóstico*        
  < 100.000 24 (38,1%) 21 (33,3%) 45 (71,4%) 0,933

(p=0,334)

  ≥ 100.000 12 (19,0%) 6 (9,5%) 18 (28,6%)
Carga Viral na Genotipagem*        
  < 100.000 30 (40,5%) 30 (40,5%) 60 (81,0%) 3,750

(p=0,053)

  ≥ 100.000 11 (14,9%) 3 (4,0%) 14 (18,9%)
Carga Viral mais Recente        
  < 100.000 39 (48,7%) 35 (43,7%) 74 (92,5%) 5,045

(p=0,025)

  ≥ 100.000 6 (7,5%) 0 (0,0%) 6 (7,5%)
LT CD4+ no Diagnóstico*        
  < 200 8 (12,1%) 6 (9,0%) 14 (21,2%) 0,001

(p=0,971)

  ≥ 200 30 (45,4%) 22 (33,3%) 52 (78,8%)
Linfócitos T CD4 mais Recente      
  < 200 12 (15,0%) 8 (10,0%) 20 (25,0%) 0,152

(p=0,696)

  ≥ 200 33 (41,2%) 27 (33,7%) 60 (75,0%)

* As informações referentes ao período de diagnóstico e genotipagem não estavam disponíveis para todos os pacientes.

LT CD4+: Linfócitos T CD4+.

 

Análise da Protease, da Transcriptase Reversa e da Integrase

A genotipagem convencional foi solicitada para todas as 80 amostras, com 78,7% das amostras apresentando carga viral detectável e 21,2% abaixo do limite de detecção dos testes de genotipagem. A análise da integrase do gene POL foi realizada em 8 amostras e todas apresentaram carga viral detectável.

Destaca-se, na Tabela 3, a maior prevalência do subtipo B na população estudada, presente em 74,6% das amostras, seguida dos subtipos F e F1, que representam, respectivamente, 12,7% e 7,9% dos pacientes. Os subtipos C (3,2%) e CRF29_BF (1,6%) foram identificados em menor proporção, destacando a diversidade genética do HIV na população estudada. Dentre as amostras que realizaram genotipagem para a integrase (n=8) a maioria das amostras (87,5%) também consistia no subtipo B do HIV.

A Tabela 4 apresenta o painel sensibilidade, estudado para 7 medicamentos da classe dos inibidores de transcriptase reversa análogos de nucleosídeo (ITRN), 4 da classe dos inibidores de transcriptase reversa não análogos de nucleosídeo (ITRNN), 8 da classe dos inibidores de protease (IP) e 3 da classe dos inibidores de integrase (INI). Em relação aos ITRN, a zidovudina apresentou sensibilidade plena para 84,13% das amostras, o tenofovir para 58,7% das amostras, e a Estavudina para 55,6% das amostras. Os demais medicamentos apresentaram sensibilidade plena em menos de 50% das genotipagens realizadas. Os altos níveis de resistência foram mais observados para a emtricitabina (23,8%) e para a lamivudina (22,2%). Dentro da classe dos ITRNN, por sua vez, a etravirina e a rilpivirina mostraram maior sensibilidade plena (63,5%), enquanto nevirapina e efavirenz apresentaram altos níveis de resistência (30,2%).

 

Tabela 3

Distribuição dos subtipos do HIV com base na análise da protease e transcriptase reversa.

Subtipo do HIV Protease e
Transcriptase Reversa

n (%*)

Integrase

n (%)

B 47 (74,6%) 7 (87,5%)
C 2 (3,2%) 1 (12,5%)
CRF29_BF 1 (1,6%) 0 (0,0%)
F 8 (12,7%) 0 (0,0%)
F1 5 (7,9%) 0 (0,0%)
Total 63 (100%) 8 (100%)

Tabela 4

Painel de sensibilidade aos antirretrovirais das classes ITRN, ITRNN, IP e INI e quantidade de mutações de resistência observadas

  Padrão de Resistência Observado Número de Mutações

Δ (média)

ANR

n (%)

BNR

n (%)

I

n (%)

PBNR

n (%)

R

n (%)

S

n (%)

ITRN              
Zidovudina 2 (3,2%) 2 (3,2%) 4 (6,3%) 1 (1,6%) 1 (1,6%) 53 (84,1%) 0 – 6

(1,682 ±1,624)

Didanosina 8 (12,7%) 7 (11,1%) 5 (7,9%) 9 (14,3%) 13 (20,6%) 21 (33,3%)
Estavudina 4 (6,35%) 4 (6,3%) 16 (25,4%) 1 (1,6%) 3 (4,76%) 35 (55,6%)
Lamivudina 14 (22,2%) 0 (0,0%) 1 (1,6%) 2 (3,2%) 21 (33,3%) 25 (39,7%)
Emtricitabina 15 (23,8%) 0 (0,0%) 1 (1,59%) 2 (3,2%) 20 (31,7%) 25 (39,7%)
Abacavir 6 (9,5%) 12 (19,0%) 10 (15,9%) 1 (1,6%) 12 (19,0%) 22 (34,9%)
Tenofovir 1 (1,6%) 8 (12,7%) 13 (20,6%) 1 (1,6%) 3 (4,8%) 37 (58,7%)
ITRNN              
Nevirapina 19 (30,2%) 0 (0,0%) 2 (3,2%) 1 (1,6%) 18 (28,6%) 23 (36,5%) 0 – 4

(1,476 ±1,330)

Efavirenz 19 (30,2%) 0 (0,0%) 2 (3,2%) 0 (0,0%) 18 (28,6%) 24 (38,1%)
Etravirina 1 (1,6%) 1 (1,6%) 9 (14,3%) 11 (17,5%) 1 (1,6%) 40 (63,5%)
Rilpivirina 4 (6,3%) 9 (14,3%) 2 (3,2%) 2 (3,2%) 6 (9,5%) 40 (63,5%)
IP              
Indinavir/R 1 (1,6%) 3 (4,8%) 1 (1,6%) 1 (1,6%) 2 (3,2%) 55 (87,3%) 0 – 9

(0,428 ±1,455)

Saquinavir/R 1 (1,6%) 3 (4,8%) 2 (3,2%) 1 (1,6%) 1 (1,6%) 55 (87,3%)
Nelfinavir 2 (3,2%) 3 (4,8%) 1 (1,6%) 0 (0,0%) 2 (3,2%) 55 (87,3%)
Fosamprenavir/R 1 (1,6%) 0 (0,0%) 2 (3,2%) 4 (6,3%) 1 (1,6%) 55 (87,3%)
Lopinavir/R * 0 (0,0%) 1 (1,6%) 3 (4,8%) 1 (1,6%) 1 (1,6%) 56 (90,3%)
Atazanavir/R * 2 (3,4%) 1 (1,7%) 0 (0,0%) 3 (5,1%) 2 (3,4%) 51 (86,4%)
Tipranavir/R * 0 (0,0%) 1 (2,8%) 1 (2,8%) 0 (0,0%) 0 (0,0%) 34 (94,4%)
Darunavir/R * 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%) 0 (0,0%) 1 (3,2%) 30 (96,8%)
INI Δ              
Raltegravir 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 8 (100%) 0

(0 ±0)

Elvitegravir 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 8 (100%)
Dolutegravir 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) 8 (100%)

* O resultado da análise estava incompleto em algumas amostras, estando ausente em 1 amostra para o lopinavir/r, em 3 amostras para o atazanavir/r, em 27 amostras para o tipranavir/r e em 32 amostras para o darunavir/r.

Δ Os resultados referentes aos INI correspondem às 8 amostras que realizaram genotipagem para a integrase.

ANR: Alto Nível de Resistência; BNR: Baixo Nível de Resistência; I: Resistência Intermediária; PBNR: Provável Baixo Nível de Resistência; R: Resistência; S: Sensibilidade; ITRN: Inibidores de Transcriptase Reversa Análogos de Nucleosídeos; ITRNN: Inibidores de Transcriptase Reversa Não Análogos de Nucleosídeos; IP: Inibidores de Protease; INI: Inibidores de Integrase.

 

 

Em relação à classe dos IP, todos os medicamentos demonstraram sensibilidade plena em mais de 85% das amostras estudadas. É válido destacar, por fim, que alguns resultados vieram sem informações quanto ao perfil de sensibilidade ao lopinavir/R, atazanavir/R, tipranavir/R e darunavir/R. No que diz respeito aos INI, todas as amostras demonstraram sensibilidade plena às três substâncias avaliadas no teste. A quantidade de mutações associadas à resistência variou entre 0 e 6 (média de 1,682 ±1,624) para a classe dos ITRN, entre 0 e 4 (1,476 ±1,330) para a classe dos ITRNN, e entre 0 e 9 (0,428 ±1,455) para a classe dos IP. Nenhuma amostra apresentou mutações associadas com resistência aos INI (ver Tabela 4).

As mutações mais prevalentes associadas à resistência aos ITRN foram a M184V (47,6%) e a K65R (23,8%). Quanto aos ITRNN, as alterações genotípicas mais observadas foram a K103N (44,4%) e a P225H (15,9%). As demais mutações associadas à resistência para essas classes estavam presentes em menos de 10% das amostras. Em relação aos IP, nenhuma mutação apresentou prevalência superior a 5%, refletindo maior sensibilidade a essa classe de medicamentos. Mutações menos frequentes, presentes em até 5% das amostras, foram amplamente distribuídas entre os medicamentos avaliados (Tabela 5).

 

Tabela 5

Prevalência das mutações de resistência observadas aos ITRN, ITRNN e IP em pacientes com falha virológica

Prevalência Classe do Antirretroviral
ITRN

n (%)

ITRNN

n (%)

IP

n (%)

≤ 50% M184V – 30 (47,6%) K103N – 28 (44,4%) —
≤ 25% K65R – 15 (23,8%) P225H – 10 (15,9%) —
≤ 10% L74I – 6 (9,5%)

M184I – 5 (7,9%)

M41L – 5 (7,9%)

A62V – 4 (6,3%)

D67N – 4 (6,3%)

K70E – 4 (6,3%)

K219E – 4 (6,3%)

V106I – 4 (6,3%)

V108I – 4 (6,3%)

L100I – 4 (6,3%)

V179D – 4 (6,3%)

—
≤ 5% K70R – 3 (4,8%)

T215S – 2 (3,2%)

V75M – 2 (3,2%)

K219R – 2 (3,2%)

K219Q – 2 (3,2%)

T215F – 2 (3,2%)

Y115F – 1 (1,6%)

K218R – 1 (1,6%)

T215N – 1 (1,6%)

T215Y – 1 (1,6%)

T215A – 1 (1,6%)

K70G – 1 (1,6%)

K70KR – 1 (1,6%)

M184MV – 1 (1,6%)

K65E – 1 (1,6%)

L74V – 1 (1,6%)

R44F – 1 (1,6%)

L210W – 1 (1,6%)

E44D – 1 (1,6%)

F77L – 1 (1,6%)

T215I – 1 (1,6%)

D67G – 1 (1,6%)

V106M – 3 (4,8%)

K103S – 3 (4,8%)

Y181C – 3 (4,8%)

F227L – 2 (3,2%)

M184I – 2 (3,2%)

H221HY – 2 (3,2%)

V179E – 2 (3,2%)

G190A – 2 (3,2%)

M230L – 2 (3,2%)

E138G – 2 (3,2%)

Y188L – 2 (3,2%)

K103R – 2 (3,2%)

E138A – 2 (3,2%)

K101P – 1 (1,6%)

A98G – 1 (1,6%)

K238T – 1 (1,6%)

Y181YC – 1 (1,6%)

P225PH – 1 (1,6%)

Y188C – 1 (1,6%)

K238KNT – 1 (1,6%)

V106A – 1 (1,6%)

E138K – 1 (1,6%)

G190 – 1 (1,6%)

M46I – 3 (4,8%)

V82A – 2 (3,2%)

I50L – 2 (3,2%)

G73C – 2 (3,2%)

L90M – 2 (3,2%)

L33F – 2 (3,2%)

G73S – 2 (3,2%)

V11I – 1 (1,6%)

L24I – 1 (1,6%)

V32I – 1 (1,6%)

Q58E – 1 (1,6%)

I54L – 1 (1,6%)

F53L – 1 (1,6%)

T74P – 1 (1,6%)

I54V – 1 (1,6%)

 

 

DISCUSSÃO

 

Análise do perfil sociodemográfico da população

O perfil sociodemográfico da população estudada foi avaliado quanto a sexo, faixa etária, estado civil e cor. Das amostras analisadas, 50% pertenciam a pessoas do sexo masculino. Outros estudos que abordaram PVHA que apresentaram falhas terapêuticas observaram uma proporção de indivíduos do sexo masculino entre 58,0% e 73,5%.(19-21) A menor proporção de indivíduos do sexo masculino no presente estudo pode ser explicada pela inclusão de genotipagens solicitadas durante a gestação, o que aumentou a representação de mulheres na amostra.

Quanto à faixa etária, a população estudada apresentou uma média de idade de 46 ± 10,58 anos, com 36,2% dos pacientes situados na faixa etária de 40 a 49 anos. Estudos prévios reportaram médias inferiores: Lima et al.(19) (2016) e Diaz et al.(22) (2023) observaram uma média de 34.0 ± 10.6 anos e 36.1 ± 10.77 anos, respectivamente, enquanto Cavalcanti et al.(21) (2007) documentaram faixa etária predominante entre 35 e 49 anos, representando 56,8% das amostras analisadas. As diferenças na distribuição etária entre os estudos podem refletir variações nos critérios de inclusão ou nas características demográficas das regiões analisadas.

No que diz respeito ao estado civil, 45% dos pacientes eram casados e 43,7% solteiros, um perfil semelhante ao evidenciado por Lima et al.(19) (2016) na Região Nordeste do Brasil. Por outro lado, Mmatsoku e Ngcobo(23) (2024), em Mamelodi, África do Sul, observaram uma proporção maior de indivíduos solteiros em relação aos casados, evidenciando diferenças contextuais relacionadas ao estado civil entre regiões geográficas distintas possivelmente devido a fatores culturais e socioeconômicos.

A cor predominante na população do estudo foi a parda (40,0%), entretanto 35,0% dos prontuários não continham informações sobre esse aspecto, evidenciando limitações no registro de dados sociodemográficos. Além disso, foi observado que 17,5% (n=14) eram pretos e 7,5% (n=6) eram brancos. É válido destacar que poucos estudos envolvendo PVHA em falha virológica avaliaram o estado civil e a cor dentro dos fatores sociodemográficos. No Brasil, um estudo que avaliou a adesão em pacientes do sexo masculino que mantinham relações sexuais com homens observou que 62.4% (n=1050) dos participantes eram brancos, 24,7% (n=416) eram pardos e 10,6% (n=178) eram pretos.(24) Por outro lado, um estudo abrangente que avaliou mais de 132 mil pacientes em tratamento antirretroviral no Brasil observou, dentro da amostragem, 44,5% (n=57.183) pacientes brancos, 43,5% (n=55.772) pardos, 11,1% (n=14.181) pretos, 0,7% (n=953) amarelos e 0,2% (n=271) indígenas.(25) As diferenças observadas em relação à cor entre o presente estudo e outras análises podem ser atribuídas, em parte, à ausência desse dado em uma proporção significativa dos prontuários, além de refletirem as particularidades dos contextos locais e regionais.

Em relação ao meio de exposição à infecção, houve predomínio da via sexual em pessoas heterossexuais (71,2%; n=57) em relação às homossexuais (7,5%; n=6). Destaca-se que não houve transmissão por outras vias dentro da população estudada, mas 21,2% (n=17) das amostras pertenciam a indivíduos cujo meio de exposição à infecção não estava documentado em prontuário. Bahls et al.(26) (2019) reportaram transmissão por via sexual em 92,3% (n=36) dos pacientes. Outros estudos documentaram transmissão via heterossexual entre 54,8% e 74%, enquanto a transmissão via homossexual variou entre 19% e 33,3% (19,27,28). Ferreira et al. (20) (2013) avaliaram o perfil de pacientes com resistência transmitida e documentaram que as vias de infecção foram, em 52% (n=120) por via homossexual, 40% (n=87) por via heterossexual e 0,4% (n=2) por uso de injetáveis. Embora os dados de prontuários incompletos limitem a identificação precisa do perfil epidemiológico, a análise evidencia o predomínio da transmissão pela via sexual, em consonância com estudos semelhantes realizados no Brasil, porém a prevalência da transmissão por via heterossexual ou homossexual varia entre diferentes populações. Essa variação reforça a importância de considerar as particularidades regionais e populacionais no planejamento de estratégias de prevenção e controle do HIV.

No que diz respeito ao motivo da genotipagem, destaca-se que as principais indicações observadas foram falha virológica (77,5%; n=62) e gestação (15%; n=12), e 7,5% (n=6) das amostras não tiveram o motivo de sua solicitação documentado. A adesão ao tratamento foi insatisfatória em 56,2% (n=45) dos pacientes. É importante ressaltar que a avaliação da adesão se refere a documentações mais recentes e não abarca todo o período de acompanhamento do paciente no serviço. Além disso, os critérios de avaliação de adesão são incertos e estão relacionados com o controle da carga viral ou a consistência da retirada dos medicamentos na farmácia, e não com o relato do paciente nem com questionários pré-estruturados.

Um estudo que avaliou a aderência em 1.719 pacientes do sexo masculino que mantinham relações sexuais com homens documentou que a adesão ao tratamento variou entre 57,8% e 70,4% a depender do instrumento de avaliação da adesão, e percebeu que um dos fatores que impactam na adesão ao tratamento é o estigma contra PVHA.(24) Outra análise que abarcou 2424 pacientes de todas as regiões do Brasil observou que 61,1% dos pacientes apresentaram pelo menos 1 sinal de má adesão.(29) Destaca-se, ainda, que um estudo realizado em Roraima levantou a possibilidade de que a má adesão possa ter uma associação mais forte com a falha terapêutica do que a presença de mutações de resistência,(28) e há evidências de que uma boa adesão esteja relacionada com melhores chances de sucesso terapêutico.(30) Diante disso, é fundamental aprofundar a adesão dos pacientes em estudos futuros e instigar o uso de instrumentos padronizados que permitam maior precisão na análise desse aspecto. A identificação de fatores associados à adesão pode contribuir para intervenções direcionadas, otimizando os resultados do tratamento e reduzindo o risco de falhas virológicas.

Foram observadas mudanças no padrão de carga viral das amostras em relação ao período do diagnóstico, da genotipagem e em exames mais recentes. A porcentagem de indivíduos com carga viral igual ou superior a 100.000 diminuiu de 28,6% para 7,5%. Essa mudança pode indicar uma melhora no controle virológico ao longo do tratamento, possivelmente associada à adesão à TARV e na eficácia da terapia. A adesão ao tratamento mostrou impacto estatisticamente significativo na carga viral mais recente (p=0,025), mostrando que pacientes com adesão satisfatória alcançaram maior controle virológico. Em contrapartida, os indivíduos com  contagem de linfócitos T CD4+ (LT CD4+) menor que 200 passaram de 21,2% para 25,0%. Isso pode indicar que, embora o controle virológico esteja sendo alcançado, a recuperação imunológica pode ser mais lenta em alguns pacientes.

Estudos anteriores corroboram com as tendências observadas. Diaz et al.(31) (2015), ao analisarem o banco de dados do Ministério da Saúde, observaram um aumento da proporção de cargas virais indetectáveis entre 2001 e 2011 e uma redução das cargas virais ao diagnóstico entre 2001 e 2009 no Brasil. Outro estudo realizado em Pernambuco observou que 33,3% (n=46) dos pacientes apresentaram carga viral igual ou superior a 100.000 cópias/mL e 34,3% apresentaram contagem de LT CD4+ < 200 células/mm³.(19) Cavalcanti et al.(21) (2007) observaram que 30,8% (n=176) das amostras tinham carga viral > 100.000 cópias/mL e 42,2% (n=241) apresentaram LT CD4+ < 200 células/mm³. Uma análise feita em São Paulo observou que 24,3% (n=412) dos pacientes apresentaram carga viral > 100.000 cópias/mL no momento da genotipagem.(32)

Destaca-se que a temporalidade da coleta e a documentação dos valores de carga viral e contagem de linfócitos T CD4+ varia entre os estudos, dificultando a comparação direta entre diferentes amostragens.(22,26-28) Portanto, percebe-se que a amostragem do presente estudo apresentou uma menor proporção de cargas virais > 100.000 cópias e uma distribuição semelhante em relação à contagem de linfócitos T CD4+ em comparação com outras populações. O presente estudo evidencia melhorias no controle da carga viral, possivelmente refletindo maior adesão ao tratamento ou efetividade da TARV. No entanto, o aumento na proporção de pacientes com LT CD4+ < 200 células/mm³ sugere desafios no restabelecimento da imunidade, que podem estar associados a fatores individuais ou relacionados ao acompanhamento clínico.

 

Análise do perfil genético do HIV e do perfil de sensibilidade à TARV

O subtipo B do HIV-1 estava presente em 74,6% (n=47) das amostras avaliadas, seguido dos subtipos F (12,7%; n=8) e F1 (7,9%; n=5). Estudos populacionais realizados na Região Nordeste também observaram maior prevalência dos subtipos B (82,4%) e F (11,8%).(21) Uma pesquisa populacional caracterizou a prevalência dos subtipos do HIV nas cinco regiões do Brasil em genotipagens pré-tratamento entre 2013 e 2015, observando uma proporção maior dos subtipos B (77,0%) e F (10,6%) para a Região Nordeste.(17) A predominância do subtipo B é semelhante à observada em outros estudos populacionais realizados no Brasil, enquanto a presença de subtipos não B, como F e F1, que juntos representam cerca de 20% das amostras, refletem a diversidade genética do HIV-1 no País.

No perfil de sensibilidade dos ITRN, destaca-se a observação de sensibilidade plena à zidovudina em 84,1% das amostras, seguido do tenofovir (58,7%). A didanosina, por outro lado, foi o antirretroviral que menos apresentou sensibilidade plena entre as amostras analisadas (33,3%; n=21), seguido do abacavir (34,9%; n=22). As maiores proporções de altos níveis de resistência foram observados para a emtricitabina (23,8%; n=15) e para a lamivudina (22,2%; n=14). Esses resultados diferem de um  estudo realizado em Minas Gerais que evidenciou maiores níveis de resistência à lamivudina (77%; n=187), à emtricitabina (72%; n=175) e à zidovudina (63,8%; n=155), e maior sensibilidade ao tenofovir (55,1%; n=134).(33) Diferenças entre estudos regionais ressaltam a importância de considerar contextos locais no manejo do tratamento antirretroviral.

Nas amostras avaliadas, as principais mutações relacionadas com resistência aos ITRN foram a M184V (47,62%, n=30) e a K65R (23,81%, n=15). Cavalcanti et al.(21) (2007) documentaram que, dentre as mutações observadas em casos de falha virológica, 66% estavam na região 184, 61,5% na região 215 e 47,9% na região 41. No presente estudo, observamos as seguintes frequências de mutações nas amostras: 57,1% (n=36) na região 184, 12,7% (n=8) na região 215 e 7,9% (n=5) na região 41. Isso evidencia uma frequência semelhante para as mutações no códon 184, mas menor em outros códons, podendo ser resultado de alterações nas estratégias terapêuticas entre a época do estudo de Cavalcanti et al. (21) (2007) e o presente estudo.

Em outra análise em casos de falha terapêutica, mutações associadas à resistência aos ITRN foram observadas em 91,5% (n=75).(27) Estudos realizados em Minas Gerais e na Região Norte do Brasil evidenciaram frequência da M184V em 77,4% e 80,1%, respectivamente, enquanto a K65R esteve presente em menos de 10% das amostras em ambos os estudos.(34,35) A mutação M184V confere resistência à lamivudina, ao abacavir e à emtricitabina e também pode aumentar a sensibilidade à zidovudina, à estavudina e ao tenofovir, explicando o padrão de resistência observado nas amostras estudadas.(36-39) Já a mutação K65R tem o potencial de conferir resistência a quase toda a classe dos ITRN, poupando apenas a zidovudina.(39,40) Portanto, a zidovudina se destaca como uma possível alternativa terapêutica dentro da população estudada, tendo em vista a sensibilidade demonstrada nas genotipagens e também o seu perfil de interação com as principais mutações observadas dentro da amostragem.

Em relação aos ITRNN, 63,5% das amostras apresentaram resistência ao efavirenz e 61,9% à nevirapina, enquanto houve sensibilidade plena em 63,5% para a etravirina e a rilpivirina. Esses resultados são consistentes com os achados de Ferreira et al.(20) (2013), que relataram níveis de resistência ao Efavirenz em 71% (n=12) das amostras avaliadas e Chaves et al.(27) (2021), que observaram maiores índices de resistência ao efavirenz (82,9%) e à nevirapina (66,4%) em relação à etravirina (7,7%) e à rilpivirina (39,4%).

Dentre as mutações associadas ao ITRNN, a K103N (44,4%) e a P225H (15,9%) foram as mais frequentes no presente estudo. Estudos anteriores relataram frequências similares, com a K103N variando entre 40,6% e 71,8%, e a P225H entre 10,6% e 40,6%.(20,27,35) A alta prevalência dessas mutações reforça sua importância como marcadores genotípicos de resistência aos ITRNN, particularmente ao efavirenz e à nevirapina.(21) Esses achados reforçam a necessidade de monitoramento genotípico contínuo e a consideração de alternativas terapêuticas, como a etravirina e a rilpivirina, em pacientes com falha virológica.

Os ITRNN já fizeram parte do tratamento de primeira linha para o HIV no Brasil,(9) e uma quantidade relativamente pequena de mutações associadas à resistência consegue levar à ineficácia de mais de um medicamento da classe.(20) A alta prevalência de resistência observada nas amostras analisadas reflete, possivelmente, a ampla utilização dessa classe de antirretrovirais. Esses achados destacam a necessidade de avaliar cuidadosamente a escolha dos fármacos com maior suscetibilidade ou, em casos de resistência significativa, considerar a substituição por outras classes de antirretrovirais para otimizar o manejo terapêutico de pacientes com falha virológica.

Os IP apresentaram suscetibilidade plena em mais de 85% das amostras analisadas, enquanto a prevalência das mutações associadas à resistência foi inferior a 5% para todas as mutações observadas. Um estudo realizado na região de Manaus (AM) mostrou altos níveis de resistência aos IP em 13% dos pacientes com falha virológica.(27) No estudo HIV-BresNet, as mutações de resistência aos IP mais frequentes na Região Nordeste foram a M46I/L e a V82A/L com frequência de 1,5% (n=4).(17)

No presente estudo, observamos uma frequência de 4,8% (n=3) para a M46I e uma frequência de 3,2% (n=2) para a V82A. Mesmo com a presença de mutações como M46I e V82A, a eficácia dos IP reforçados com ritonavir permanece alta devido à necessidade de múltiplas mutações para impactar significativamente sua atividade, e essa característica torna os IP úteis em esquemas de resgate, mesmo em populações com resistência prévia.(41) O perfil genotípico do HIV observado reforça o potencial dos IP como uma estratégia terapêutica viável para o manejo de pacientes com falha terapêutica. No entanto, destaca-se a necessidade de monitorar a exposição prolongada a esses medicamentos, visto o risco de surgimento de mutações específicas que podem comprometer a sua eficácia em esquemas de resgate.

Em relação aos INI, houve sensibilidade plena para o raltegravir, o elvitegravir e o dolutegravir, e nenhuma mutação de resistência foi identificada nessa classe. Outros estudos avaliaram genotipagens pré-tratamento em Porto Alegre e em São Paulo, evidenciando mutações de resistência aos INI em 3 das 234 amostras analisadas.(42,43) Uma pesquisa conduzida na Suíça entre 2008 e 2014 encontrou apenas 0,1% (1 de 1.316 amostras analisadas) de resistência transmitida aos INI.(44)

Esses achados corroboram a baixa prevalência de resistência transmitida a esta classe, mesmo em regiões onde os INI são amplamente utilizados no manejo do HIV.(45) Essa baixa prevalência pode ser atribuída à barreira genética elevada dos INI e ao fato de que seu uso se intensificou apenas nos últimos anos. Essa característica reforça a escolha desta classe como parte do esquema terapêutico primário recomendado pelo Ministério da Saúde.(9) Entretanto, percebe-se uma carência de estudos que avaliem a resistência adquirida a estes fármacos,  uma vez que a maioria das análises disponíveis concentra-se no contexto de genotipagens pré-tratamento.

As principais limitações deste estudo estão relacionadas à coleta de dados retrospectiva que pode introduzir vieses, especialmente relacionados à documentação dos prontuários e à ausência de informações sociodemográficas e clínicas que limita a caracterização mais robusta das análises e do perfil da população estudada; além disso, a realização em um único centro e o número pequeno de genotipagens limitam a extrapolação para outras regiões do Brasil, que apresentam variações nos perfis de resistência e adesão.

Em relação à adesão ao tratamento, a definição utilizada neste estudo limita-se ao controle da carga viral, não sendo, portanto, ativamente documentada em prontuário. Essa limitação quanto ao conceito de adesão pode trazer vieses tanto para a avaliação clínica do paciente quanto para a criteriosidade dos dados obtidos neste estudo, pois uma causa importante de falha terapêutica é a má adesão, que traz consigo maiores riscos do desenvolvimento de novas mutações.(46) Outro aspecto importante diz respeito à cronologia das genotipagens, pois muitas vezes não estava documentado de forma adequada o motivo da solicitação da genotipagem, impedindo a identificação de genotipagens pré-tratamento e, portanto, a definição da prevalência de mutações transmitidas.

 

CONCLUSÃO

 

Este estudo destacou o perfil genotípico de resistência aos antirretrovirais em PVHA, identificando os subtipos B, F e F1 como predominantes e ressaltando a zidovudina, os inibidores de protease (IP) e os inibidores de integrase (INI) como opções terapêuticas viáveis devido à alta sensibilidade e baixa prevalência de mutações de resistência. Não foram observadas diferenças significativas nos aspectos sociodemográficos ou quanto à contagem de LT CD4+, mas foi constatada uma relação positiva entre a adesão e o controle da carga viral, evidenciando a importância de estratégias que promovam a adesão, especialmente entre pacientes com falha virológica.

O perfil de resistência regional apresentado pode subsidiar adaptações nos Protocolos Clínicos e Diretrizes Terapêuticas (PCDT-HIV), alinhando-os às demandas locais e contribuindo para a melhoria dos desfechos clínicos. O estudo também ressalta a importância da capacitação de profissionais de saúde, da padronização no preenchimento de prontuários e do uso de instrumentos sistematizados para avaliar a adesão ao tratamento. Sendo pioneiro na região, este trabalho fornece subsídios valiosos para o manejo clínico e o planejamento de políticas públicas, visando superar barreiras associadas à adesão e à resistência ao tratamento. Por fim, reforça-se a necessidade de novos estudos que investiguem mais profundamente os fatores associados à adesão em PVHA, além da viabilidade de traçar o perfil genômico por meio de genotipagens pré-tratamento na região.

 

REFERÊNCIAS

 

  1. Sharp PM, Hahn BH. Origins of HIV and the AIDS Pandemic. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine 2011;1:a006841-a006841. doi: 10.1101/cshperspect.a006841.
  2. Ministério da Saúde. Guia de vigilância em saúde: volume 2. 6ª ed. Brasília, DF: Ministério da Saúde; 2023. Disponível em: https://bvsms.saude.gov.br/bvs/publicacoes/guia_vigilancia_saude_v2_6ed.pdf
  3. Marcus JL, Leyden WA, Alexeeff SE, Anderson AN, Hechter RC, Hu H, et al. Comparison of Overall and Comorbidity-Free Life Expectancy Between Insured Adults With and Without HIV Infection, 2000-2016. JAMA Network Open 2020;3:e207954. doi: 10.1001/jamanetworkopen.2020.7954.
  4. Nickel K, Halfpenny NJA, Snedecor SJ, Punekar YS. Comparative efficacy, safety and durability of dolutegravir relative to common core agents in treatment-naïve patients infected with HIV-1: an update on a systematic review and network meta-analysis. BMC Infectious Diseases 2021;21. doi: 10.1186/s12879-021-05850-0.
  5. LeMessurier J, Traversy G, Varsaneux O, Weekes M, Avey MT, Niragira O, et al. Risk of sexual transmission of human immunodeficiency virus with antiretroviral therapy, suppressed viral load and condom use: a systematic review. Canadian Medical Association Journal 2018;190:E1350–60. doi: 10.1503/cmaj.180311.
  6. Unaids. 2023 Report. UNAIDS – Global Report 2023 2023. Disponível em: https://thepath.unaids.org/ Acesso em: 28 ago 2024.
  7. Unaids. Brazil. UNAIDS n.d. Disponível em: https://www.unaids.org/en/regionscountries/countries/brazil Acesso em: 28 ago 2024.
  8. Ministério da Saúde. Boletim Epidemiológico – HIV e AIDS 2023. Brasília: Ministério da Saúde; 2023.
  9. Ministério da Saúde. Protocolos clínicos e diretrizes terapêuticas (PCDTs). Departamento de HIV, Aids, Tuberculose, Hepatites Virais e Infecções Sexualmente Transmissíveis n.d. Disponível em: https://www.gov.br/aids/pt-br/central-de-conteudo/pcdts Acesso em: 28 ago 2024.
  10. Aquaro S, Borrajo A, Pellegrino M, Svicher V. Mechanisms underlying of antiretroviral drugs in different cellular reservoirs with a focus on macrophages. Virulence 2020;11:400–13. doi: 10.1080/21505594.2020.1760443.
  11. Xiao T, Cai Y, Chen B. HIV-1 Entry and Membrane Fusion Inhibitors. Viruses 2021;13:735. doi: 10.3390/v13050735.
  12. Günthard HF, Calvez V, Paredes R, Pillay D, Shafer RW, Wensing AM, et al. Human Immunodeficiency Virus Drug Resistance: 2018 Recommendations of the International Antiviral Society–USA Panel. Clinical Infectious Diseases 2018;68:177-87. doi: 10.1093/cid/ciy463.
  13. Feder AF, Harper KN, Brumme CJ, Pennings PS. Understanding patterns of HIV multi-drug resistance through models of temporal and spatial drug heterogeneity. eLife 2021;10. doi: 10.7554/elife.69032.
  14. McCluskey SM, Siedner MJ, Marconi VC. Management of Virologic Failure and HIV Drug Resistance. Infectious Disease Clinics of North America 2019;33:707-42. doi: 10.1016/j.idc.2019.05.004.
  15. Foka FET, Mufhandu HT. Current ARTs, Virologic Failure, and Implications for AIDS Management: A Systematic Review. Viruses 2023;15:1732. doi: 10.3390/v15081732.
  16. Ministério da Saúde. Manual Técnico para Avaliação de Exames de Genotipagem do HIV. Brasília, DF: Ministério da Saúde; 2019. Disponível em: https://www.gov.br/aids/pt-br/central-de-conteudo/publicacoes/2019/manual-tecnico-para-avaliacao-de-exames-de-genotipagem-do-hiv
  17. Arruda MB, Boullosa LT, Cardoso CC, da Costa CM, Brites C, de Lima ST, et al. Brazilian network for HIV Drug Resistance Surveillance (HIV‐BresNet): a survey of treatment‐naive individuals. Journal of the International AIDS Society 2018;21. doi: 10.1002/jia2.25032.
  18. Collier DA, Monit C, Gupta RK. The Impact of HIV-1 Drug Escape on the Global Treatment Landscape. Cell Host &amp; Microbe 2019;26:48-60. doi: 10.1016/j.chom.2019.06.010.
  19. Lima K, de Souza Leal É, Cavalcanti AMS, Salustiano DM, de Medeiros LB, da Silva SP, et al. Epidemiological, Clinical and Antiretroviral Susceptibility Characterization of Human Immunodeficiency Virus Subtypes B and Non-B in Pernambuco, Northeast Brazil. PLOS ONE 2016;11:e0155854. doi: 10.1371/journal.pone.0155854.
  20. Ferreira JLP, Rodrigues R, Lança AM, de Almeida VC, Rocha SQ, Ragazzo TG, et al. Transmitted Drug Resistance among People Living with HIV/Aids at Major Cities of Sao Paulo State, Brazil. Advances in Virology 2013;2013:1-7. doi: 10.1155/2013/878237.
  21. Cavalcanti AMS, Lacerda HR, Brito AM de, Pereira S, Medeiros D, Oliveira S. Antiretroviral resistance in individuals presenting therapeutic failure and subtypes of the human immunodeficiency virus type 1 in the Northeast Region of Brazil. Memórias Do Instituto Oswaldo Cruz 2007;102:785-92. doi: 10.1590/s0074-02762007005000109.
  22. Diaz RS, Hunter JR, Camargo M, Dias D, Galinskas J, Nassar I, et al. Dolutegravir-associated resistance mutations after first-line treatment failure in Brazil. BMC Infectious Diseases 2023;23. doi: 10.1186/s12879-023-08288-8.
  23. Mmatsoku MS, Ngcobo S. Factors linked to virological failure in people on a dolutegravir-based regimen in Mamelodi. Southern African Journal of Infectious Diseases 2024;39. doi: 10.4102/sajid.v39i1.670.
  24. Matos VC, Torres TS, Luz PM. Adherence to antiretroviral therapy among cisgender gay, bisexual and other men who have sex with men in Brazil: Evaluating the role of HIV-related stigma dimensions. PLOS ONE 2024;19:e0308443. doi: 10.1371/journal.pone.0308443.
  25. Nemes MIB, Sayuri Sato AP, Reis-Santos B, Maroso Alves A, Parra do Nascimento F, Agins B. Time from treatment initiation to HIV viral suppression in public care facilities in Brazil: A nationwide linked databases cohort. PLOS ONE 2024;19:e0305311. doi: 10.1371/journal.pone.0305311.
  26. Bahls LD, Canezin PH, Reiche EMV, Fernandez JCC, Dias JRC, Meneguetti VAF, et al. Moderate prevalence of HIV-1 transmitted drug resistance mutations in southern Brazil. AIDS Research and Therapy 2019;16. doi: 10.1186/s12981-019-0219-1.
  27. Chaves YO, Pereira FR, de Souza Pinheiro R, Batista DRL, da Silva Balieiro AA, de Lacerda MVG, et al. High Detection Rate of HIV Drug Resistance Mutations among Patients Who Fail Combined Antiretroviral Therapy in Manaus, Brazil. BioMed Research International 2021;2021:1-9. doi: 10.1155/2021/5567332.
  28. Corado A de LG, Bello G, Leão RAC, Granja F, Naveca FG. HIV-1 genetic diversity and antiretroviral drug resistance among individuals from Roraima state, northern Brazil. PLOS ONE 2017;12:e0173894. doi: 10.1371/journal.pone.0173894.
  29. Santos MA, Guimarães MDC, Helena ETS, Basso CR, Vale FC, Carvalho WM do ES, et al. Monitoring self-reported adherence to antiretroviral therapy in public HIV care facilities in Brazil. Medicine 2018;97:S38-45. doi: 10.1097/md.0000000000009015.
  30. Bhagwat P, Kapadia SN, Ribaudo HJ, Gulick RM, Currier JS. Racial Disparities in Virologic Failure and Tolerability During Firstline HIV Antiretroviral Therapy. Open Forum Infectious Diseases 2019;6. doi: 10.1093/ofid/ofz022.
  31. Diaz RS, Inocêncio LA, Sucupira MCA, Pereira AA, Hunter J, Ferreira JE, et al. The Virological and Immunological Characteristics of the HIV-1-Infected Population in Brazil: From Initial Diagnosis to Impact of Antiretroviral Use. PLOS ONE 2015;10:e0139677. doi: 10.1371/journal.pone.0139677.
  32. Soldi G de FR, Ribeiro IC, Ahagon CM, Coelho LPO, Cabral GB, Lopes GISL, et al. Major drug resistance mutations to HIV-1 protease inhibitors (PI) among patients exposed to PI class failing antiretroviral therapy in São Paulo State, Brazil. PLOS ONE 2019;14:e0223210. doi: 10.1371/journal.pone.0223210.
  33. Westin MR. Análise do perfil de mutações, subtipos e vias mutacionais do HIV-1 associados à resistência aos anti-retrovirais, em Minas Gerais no período de 2002 a 2006 2009. https://repositorio.ufmg.br/handle/1843/ECJS-7T9N5M.
  34. Duani H, Aleixo AW, Tupinambás U. Trends and predictors of HIV-1 acquired drug resistance in Minas Gerais, Brazil: 2002-2012. The Brazilian Journal of Infectious Diseases 2017;21:148-54. doi: 10.1016/j.bjid.2016.11.009.
  35. Lopes CAF, Soares MA, Falci DR, Sprinz E. The Evolving Genotypic Profile of HIV-1 Mutations Related to Antiretroviral Treatment in the North Region of Brazil. BioMed Research International 2015;2015:1-6. doi: 10.1155/2015/738528.
  36. Machado LFA, Costa IB, Folha MN, da Luz ALB, Vallinoto ACR, Ishak R, et al. Lower genetic variability of HIV-1 and antiretroviral drug resistance in pregnant women from the state of Pará, Brazil. BMC Infectious Diseases 2017;17. doi: 10.1186/s12879-017-2392-y.
  37. Margot N, Ram R, Abram M, Haubrich R, Callebaut C. Antiviral Activity of Tenofovir Alafenamide against HIV-1 with Thymidine Analog-Associated Mutations and M184V. Antimicrob Agents Chemother 2020;64:e02557-19. doi: 10.1128/AAC.02557-19.
  38. Mimtsoudis I, Tsachouridou O, Akinosoglou K, Metallidis S. Treatment Management Challenges in Naïve and Experienced HIV-1-Infected Individuals Carrying the M184V Mutation. Viruses 2024;16:1392. doi: 10.3390/v16091392.
  39. Brenner BG, Coutsinos D. The K65R mutation in HIV-1 reverse transcriptase: genetic barriers, resistance profile and clinical implications. HIV Ther 2009;3:583-94. doi: 10.2217/hiv.09.40.
  40. Grant PM, Taylor J, Nevins AB, Calvez V, Marcelin A-G, Wirden M, et al. International Cohort Analysis of the Antiviral Activities of Zidovudine and Tenofovir in the Presence of the K65R Mutation in Reverse Transcriptase. Antimicrob Agents Chemother 2010;54:1520-5. doi: 10.1128/AAC.01380-09.
  41. Wensing AM, Calvez V, Ceccherini-Silberstein F, Charpentier C, Günthard HF, Paredes R, et al. 2019 update of the drug resistance mutations in HIV-1. Topics in Antiviral Medicine 2019;27:111-21.
  42. Matsuda EM, da Silva Santos JH, Ahagon CM, López-Lopes GIS, Brígido LF de M. Transmitted Antiretroviral Drug Resistance to Integrase Strand Transfer Inhibitors Class in São Paulo Metropolitan Area, Brazil. AIDS Research and Human Retroviruses 2024. doi: 10.1089/aid.2023.0127.
  43. Nunes CC, Sita A, Mallmann L, Birlem GE, de Mattos LG, Da Silva DH, et al. HIV-1 genetic diversity and transmitted drug resistance to integrase strand transfer inhibitors among recently diagnosed adults in Porto Alegre, South Brazil. Journal of Antimicrobial Chemotherapy 2022;77:3510-4. doi: 10.1093/jac/dkac355.
  44. Scherrer AU, Yang W-L, Kouyos RD, Böni J, Yerly S, Klimkait T, et al. Successful Prevention of Transmission of Integrase Resistance in the Swiss HIV Cohort Study. Journal of Infectious Diseases 2016;214:399-402. doi: 10.1093/infdis/jiw165.
  45. Bailey AJ, Rhee S-Y, Shafer RW. Integrase Strand Transfer Inhibitor Resistance in Integrase Strand Transfer Inhibitor-Naive Persons. AIDS Research and Human Retroviruses 2021;37:736-43. doi: 10.1089/aid.2020.0261.
  46. Figueiredo Saad F, Kaminami Morimoto H, Wiechmann SL, Bonametti AM, Ueda LT, Matsuo T, et al. Frequency and diversity of human immunodeficiency virus type 1 mutations associated with antiretroviral resistance among patients from Southern Brazil failing highly active antiretroviral therapy (HAART). International Journal of Molecular Medicine 2010;26:585-93.

 

Correspondência

Jéssica Bomfim de Almeida

E-mail: [email protected]